CLA对HepG2细胞脂肪堆积的影响
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【摘要】目的 研究共轭亚油酸对HepG2细胞中脂质沉积的影响。方法 以HepG2细胞为研究对象,以不同浓度CLA(10μmol·L-1、50μmol·L-1、100μmol·L-1)作用细胞24小时,采用油红染色、RT-PCR等方法检测肝脏脂肪沉积、ACC mRNA表达,观察CLA对肝细胞内脂质沉积的影响。结果 CLA增加HepG2细胞中脂质沉积,50μmol·L-1CLA组细胞中红染脂滴与对照组相比明显增多;CLA使HepG2细胞培养液中游离脂肪酸降低,50μmol·L-1组的培养液中游离脂肪酸与对照组相比含量降低了50%(P< 0.05);CLA增加HepG2细胞ACC mRNA的表达,ACC mRNA表达水平随CLA浓度增加而增高。结论 CLA可增加HepG2细胞的脂肪沉积;其机制可能与CLA能够改变肝细胞中ACC的表达有关。
【关键词】共轭亚油酸 (CLA) HepG2细胞 脂肪代谢 ACC
共轭亚油酸(conjugated linoleic acids,CLA)是由一组具有共轭不饱和双键的亚油酸的异构体构成的混合物。1987年Michael Pariza研究小组分离出CLA,能够抑制化学诱导的皮肤肿瘤形成[1]。CLA有减轻肥胖、抗肿瘤、防止动脉粥样硬化、提高机体免疫力、增加骨密度、促进生长等多种生理功能。但是一些研究发现,CLA在减少体内脂肪的同时,可能出现肝脏脂肪代谢障碍,出现肝脏脂肪沉积的现象,其确切的分子机制尚不明确[2]。本实验就是研究CLA对肝脏细胞脂肪堆积的影响。
1 材料
1.1 HepG2细胞
第四军医大学营养与食品卫生学教研室惠赠。
1.2 主要试剂
高糖DMEM培养基,Gibco公司;新生小牛血清,杭州四季青;胰蛋白酶,Wolsen公司,四甲基偶氮噻唑兰(MTT),Amresco公司;油红O-0625,Sigma公司,共轭亚油酸(CLA),Sigma公司;游离脂肪酸测试盒南京建成科技有限公司;TRIZOL,Invitrogen公司;反转录试剂盒Fermentas公司葡萄糖试剂盒,上海复星公司。
1.3 主要仪器与设备
NU-2500E型CO2孵箱,倒置相差显微镜,YI-875SA医用超净工作台,酶联免疫检测仪,MyCycler thermal cycle,凝胶成像仪等。
1.4 引物
引物由奥达公司合成,其中ACC引物为:5’-TGATGTCAATCTCCCTGCAGC-3’;5’- TTGCCTCTTCTCTGTTTTCTCCCC-3’。
β-ACTIN引物为:5’-AGCGGGAAATCGTGCGTG-3;5’-CAGGGTACATGGTGGTGCC-3’。
2 实验方法
2.1 细胞培养
HepG2细胞置于含10%新生小牛血清的高糖DMEM培养液中,含有100 IU/ml 青霉素,100μg/ml链霉素,37℃、5%CO2、饱和湿度的恒温孵箱条件下培养,用胰蛋白酶消化液消化。
2.2 油红O染色观察HepG2细胞脂质沉积
将HepG2细胞接种于放有干净盖玻片的6孔板内,37 ℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养。待细胞长至80%满时,吸弃培养液,加入不同浓度CLA作用24小时后,终止培养;弃培养液,每孔加入1ml10%的甲醛溶液室温孵育5分钟。除去甲醛溶液,加入同等体积的10%甲醛室温孵育1小时,用锡纸包封好避免干燥;除去甲醛溶液,60%的异丙醇冲洗,完全干燥;加入油红O工作液放置10分钟,除去油红O立即用蒸馏水冲洗4次,晾干后在倒置显微镜下观察。
2.3 染色法测定培养液中的游离脂肪酸
将HepG2细胞以每孔5×104个细胞接种于24孔培养板内,37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养。待细胞长至80%满时,吸弃培养液,将实验组分为1%血清的DMEM培养液空白对照组(无细胞),正常细胞对照组(含1%血清的DMEM培养液)、CLA干预组(浓度为0、10、50、100μmol·L-1),每组设3孔并列,孵箱中培养24小时后吸弃培养液,CLA干预组每孔加入1ml 100nmol·L-1的`胰岛素溶液作用1小时后,按照试剂盒说明书方法,采用比色法测定培养液中游离脂肪酸的变化,同时24孔板内细胞胰酶消化后细胞计数板计数。
2.4 胞总RNA的提取
用TRIZOL试剂按操作说明书提取,提取的RNA用约25μL DEPC 处理水溶解。
2.5 RNA纯度鉴定
取RNA5μL,稀释100倍后用紫外分光光度计测定其OD260和OD280值,并计算OD260/OD280值及RNA浓度。
2.6 cDNA的合成
(1)以提取的总RNA3μg为模板,cDNA合成反应体系为12μL,包括:提取的总RNA模板3μg,Primer Oligo(dT)5μL,RNase,用DEPC水补至12μL。3-5sec离心混匀,65℃加热5min后置于冰浴中。
(2)逆转录反应 反应体系包括:5×RTbuffer 4μL;RNase Inhibitor 1μL;10mMdNTPmix 2μL;Rever Tra Ace 1μL;补水到20μL。3-5sec离心混匀,37℃孵育5min后冰浴。
(3)加入M-MuLV反转录酶1μL,总体积为20μL。离心混匀,3-5s,42℃孵育60min。
(4)70℃加热10min以终止反应。合成的cDNA保存于-20℃或用于扩增。
2.7 PCR反应体系
10×Reaction Buffer 5μL;10mM dNTPs 1μL;Primer1(P1)和 Primer2(P2) 各20pmol;cDNA 2μL;KOD-Plus 1μL; H2O 33μL,总体积为50μL。
【关键词】共轭亚油酸 (CLA) HepG2细胞 脂肪代谢 ACC
共轭亚油酸(conjugated linoleic acids,CLA)是由一组具有共轭不饱和双键的亚油酸的异构体构成的混合物。1987年Michael Pariza研究小组分离出CLA,能够抑制化学诱导的皮肤肿瘤形成[1]。CLA有减轻肥胖、抗肿瘤、防止动脉粥样硬化、提高机体免疫力、增加骨密度、促进生长等多种生理功能。但是一些研究发现,CLA在减少体内脂肪的同时,可能出现肝脏脂肪代谢障碍,出现肝脏脂肪沉积的现象,其确切的分子机制尚不明确[2]。本实验就是研究CLA对肝脏细胞脂肪堆积的影响。
1 材料
1.1 HepG2细胞
第四军医大学营养与食品卫生学教研室惠赠。
1.2 主要试剂
高糖DMEM培养基,Gibco公司;新生小牛血清,杭州四季青;胰蛋白酶,Wolsen公司,四甲基偶氮噻唑兰(MTT),Amresco公司;油红O-0625,Sigma公司,共轭亚油酸(CLA),Sigma公司;游离脂肪酸测试盒南京建成科技有限公司;TRIZOL,Invitrogen公司;反转录试剂盒Fermentas公司葡萄糖试剂盒,上海复星公司。
1.3 主要仪器与设备
NU-2500E型CO2孵箱,倒置相差显微镜,YI-875SA医用超净工作台,酶联免疫检测仪,MyCycler thermal cycle,凝胶成像仪等。
1.4 引物
引物由奥达公司合成,其中ACC引物为:5’-TGATGTCAATCTCCCTGCAGC-3’;5’- TTGCCTCTTCTCTGTTTTCTCCCC-3’。
β-ACTIN引物为:5’-AGCGGGAAATCGTGCGTG-3;5’-CAGGGTACATGGTGGTGCC-3’。
2 实验方法
2.1 细胞培养
HepG2细胞置于含10%新生小牛血清的高糖DMEM培养液中,含有100 IU/ml 青霉素,100μg/ml链霉素,37℃、5%CO2、饱和湿度的恒温孵箱条件下培养,用胰蛋白酶消化液消化。
2.2 油红O染色观察HepG2细胞脂质沉积
将HepG2细胞接种于放有干净盖玻片的6孔板内,37 ℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养。待细胞长至80%满时,吸弃培养液,加入不同浓度CLA作用24小时后,终止培养;弃培养液,每孔加入1ml10%的甲醛溶液室温孵育5分钟。除去甲醛溶液,加入同等体积的10%甲醛室温孵育1小时,用锡纸包封好避免干燥;除去甲醛溶液,60%的异丙醇冲洗,完全干燥;加入油红O工作液放置10分钟,除去油红O立即用蒸馏水冲洗4次,晾干后在倒置显微镜下观察。
2.3 染色法测定培养液中的游离脂肪酸
将HepG2细胞以每孔5×104个细胞接种于24孔培养板内,37℃、5%CO2及饱和湿度条件下培养。待细胞长至80%满时,吸弃培养液,将实验组分为1%血清的DMEM培养液空白对照组(无细胞),正常细胞对照组(含1%血清的DMEM培养液)、CLA干预组(浓度为0、10、50、100μmol·L-1),每组设3孔并列,孵箱中培养24小时后吸弃培养液,CLA干预组每孔加入1ml 100nmol·L-1的`胰岛素溶液作用1小时后,按照试剂盒说明书方法,采用比色法测定培养液中游离脂肪酸的变化,同时24孔板内细胞胰酶消化后细胞计数板计数。
2.4 胞总RNA的提取
用TRIZOL试剂按操作说明书提取,提取的RNA用约25μL DEPC 处理水溶解。
2.5 RNA纯度鉴定
取RNA5μL,稀释100倍后用紫外分光光度计测定其OD260和OD280值,并计算OD260/OD280值及RNA浓度。
2.6 cDNA的合成
(1)以提取的总RNA3μg为模板,cDNA合成反应体系为12μL,包括:提取的总RNA模板3μg,Primer Oligo(dT)5μL,RNase,用DEPC水补至12μL。3-5sec离心混匀,65℃加热5min后置于冰浴中。
(2)逆转录反应 反应体系包括:5×RTbuffer 4μL;RNase Inhibitor 1μL;10mMdNTPmix 2μL;Rever Tra Ace 1μL;补水到20μL。3-5sec离心混匀,37℃孵育5min后冰浴。
(3)加入M-MuLV反转录酶1μL,总体积为20μL。离心混匀,3-5s,42℃孵育60min。
(4)70℃加热10min以终止反应。合成的cDNA保存于-20℃或用于扩增。
2.7 PCR反应体系
10×Reaction Buffer 5μL;10mM dNTPs 1μL;Primer1(P1)和 Primer2(P2) 各20pmol;cDNA 2μL;KOD-Plus 1μL; H2O 33μL,总体积为50μL。
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